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BioAssay Systems/EnzyFluo™ NAD/NADH Assay Kit/100 tests/EFND-100
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BioAssay Systems/EnzyFluo™ NAD/NADH Assay Kit/100 tests/EFND-100
品牌 / 
BioAssay Systems
货号 / 
EFND-100
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EnzyFluo™ NAD/NADH Assay Kit

EnzyFluo™ NAD/NADH Assay Kit Catalog No: EFND-100
Price: $389 Qty:
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NAD/NADH Assay Kit (EFND-100)
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ProtocolSDS

Application

  • For sensitive determination of NAD and NADH and evaluation of drug effects on NAD/NADH metabolism. Direct NAD/NADH Assays in 96-Well PlateNEW!!!

Key Features

  • Sensitive and accurate. Detection limit of 0.02 μM and linearity up to 1 μM NAD+/NADH in 96-well plate assay.
  • Convenient. The procedure involves adding a single working reagent, and reading the fluorescence at time zero and 10 min.
  • High-throughput. Can be readily automated as a high-throughput 96-well plate assay for thousands of samples per day.

Method

  • F530/585nm

Samples

  • Cell, tissue extracts etc Direct NAD/NADH Assays in 96-Well PlateNEW!!!

Species

  • All

Size

  • 100 tests

Detection Limit

  • 0.02 μM

Shelf Life

  • 6 months

More Details

  • Pyridine nucleotides play an important role in metabolism and, thus, there is continual interest in monitoring their concentration levels. Quantitative determination of NAD+/NADH has applications in research pertaining to energy transformation and redox state of cells or tissue. BioAssay Systems EnzyFluo™ NAD+/NADH assay kit is based on a lactate dehydrogenase cycling reaction, in which the formed NADH reduces a probe into a highly fluorescent product. The fluorescence intensity of this product, measured at λex/em = 530/585 nm, is proportional to the NAD+/NADH concentration in the sample. This assay is highly specific for NAD+/NADH with minimal interference (<1%) by="">+/NADPH and is a convenient method to measure NAD, NADH and their ratio. Direct NAD/NADH Assays in 96-Well PlateNEW!!!

Can I determine NAD/NADH directly in 96-well plates?

Yes, NAD/NADH can be determined directly in 96-well plate. Please see our optimized protocolDirect NAD/NADH Assays in 96-Well Plate

When tissue is used, should it be freshly obtained? Or is -80°C storage ok?

If direct sample processing is not possible, we recommend snap freezing tissue samples in liquid nitrogen and keeping them either in liquid nitrogen or at -80°C until further processing.

I have conducted protocols that involve trypsinizing cells, washing with PBS, pelleting, and then applying extraction buffer. My concern with this method is that PBS is known to cause mitochondrial fragmentation very soon after application to cells. Obviously, the functionality of the mitochondria is very important for NADH/NAD levels. I developed an alternative by keeping my cells adhered to the plate, washing once with pbs, applying heated extraction buffer to the cells directly and then scraping cells off. Do you have any thoughts or experience that would indicate whether one method is better than the other?

The second method is better because the first method may cause mitochondrial fragmentation and thus may alter intracellular NAD/NADH concentrations. The second method involves less pretreatment. Adding the heated extraction buffer terminates the metabolic reactions in the cells and is thus much less likely to alter the intracellular NAD/NADH concentrations.

I have also done many experiments with different numbers of cells. What I notice is that there seems to be a sigmoidal relationship between the number of cells and the NAD and NADH concentrations. I am using C2C12 and H9C2 cells. Do you have any experience with these cells at different seeding densities? Also, do you consistently see a relationship between number of cells NAD(H) concentrations? Is this relationship linear, exponential, sigmoidal?

We have not done these experiments. Your results are very interesting, and not unexpected. In general, cells are healthy at certain densities. When cells lack contacts for a healthy environment at low density, they are likely to produce less NAD/NADH, and if too dense, the cells become less active and thus would reach a plateau in NAD/NADH concentrations.For more detailed product information and questions, please feel free to Contact Us. Or for more general information regarding our assays, please refer to our General Questions.
Liemburg-Apers, Dania C., et al (2016). Acute stimulation of glucose influx upon mitoenergetic dysfunction requires LKB1, AMPK, Sirt2 and mTOR-RAPTOR. J Cell Sci 129.23: 4411-4423. Assay: NAD/NADH in mouse cells. Kim, Ha-Neui, et al. (2015) Sirtuin1 suppresses osteoclastogenesis by deacetylating FoxOs. Molecular Endocrinology 29.10: 1498-1509. Assay: NAD/NADH in mice.To find more recent publications, pleaseclick here.
If you or your labs do not have the equipment or scientists necessary to run this assay, BioAssay Systems can perform the service for you.Simply send us your samples:- Fast turnaround - Quality data - Low costPlease email or call 1-510-782-9988 x 2 to request assay service.
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环氧树脂是指含有两个或多个环氧基团的树脂的总称。... 查看更多>
书中对RNA 干扰的理论系统、技术体系及应用研究进行整体的构思,以该领域最新的研究成果为基础,除了双链RNA干扰之外,重点突出了对新发现的微小RNA(miR NA)进展的描述,从而全面系统地描述了RNA干扰;结合作者实验中的研究经验,系统地介绍了当今RNA干扰在多种生物体系中研究的实用技术方法。... 查看更多>
近日美国生物技术公司Alnylam宣布叫停revusiran的三期临床开发。revusiran作为RNAi疗法首个进入临床阶段的治疗性药物,它的失利是该领域面临的又一沉重打击。 查看更多>
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  RNAi技术先驱Cell子刊:优化RNAi新工具RNAi是在20世纪90年代末发现的一种自然生物学机制,指的是一些短RNA分子结合并“干扰”了包含蛋白质生成指令的一些基因所发送的信息。这样的干扰可以阻止基因表达。除帮助调控基因表达,在包括人类在内的许多物种中RNAi信号通路还保护了基因组对抗寄生病毒及转座子。自2000年代中期科学家们开始利用RNAi以来,它提供了一种人为“抑制”特异基因表达的途经。例如,通过在小鼠一类的模型生物体中... 查看更多>
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2017-06-27
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酶标仪法测蛋白浓度123
狼恋莫_1x22018-01-14
RNA干扰的分子抑制机制的三种方式及原理
转录抑制
与RNAi有关的dsRNA及蛋白质可参与染色质的修饰作用,使其中的组蛋白和DNA发生甲基化作用,使相应基因不能被转录,从而导致受阻基因不能表达。这种在转录水平上阻断基因功能,使基因沉默的RNAi方式被称为转录基因沉默(Transcriptional gene silencing,TGS)。这种现象先在植物中得到证实,但是在哺乳动物中是否存在仍有争议。2004年Svoboda等研究表明,在小鼠卵母细胞中,通过RNAi引起靶基因表达沉默的长dsRNA不能引起相应DNA区域从头合成DNA的甲基化。Morris等也于同年得出实验结论,针对内源基因启动子的siRNA能够引起其区域内CG岛以及组蛋白H3K9的甲基化,从而在转录水平抑制基因的表达。
转录后抑制
不同来源的dsRNA通过各种转基因技术转入植物、线虫或哺乳动物细胞内,、被切割产生siRNA片断,再由合成的RISC切割靶mRNA从而阻断基因表达。这种基因能正常转录成mRNA,但mRNA因被降解使基因功能被阻断,这种RNAi方式叫做转录后沉默(Post transcriptional gene silencing,PTGS)。siRNA对靶mRNA降解具有序列特异性,只能引起同源mRNA降解,如果siRNA与mRNA有一个bp不配对,RNAi作用就极大降低,如果两者有4个bp不配对,就不能产生RNAi。
翻译抑制
Grishok等在研究RNAi时,发现在细胞中在细胞中存在内源性小片段单链RNA(ssRNA),其长度也在21~25 nt之间,这种ssRNA可与mRNA的3′非翻译区(3′UTR)特异性地结合,从而抑制mRNA的翻译和相应的功能蛋白质合成。这种小片段的ssRNA叫做stRNA(small temporal RNA)。ssRNA的形成是因为当RNA的大小为70~80 nt时,容易形成双链的茎环状结构,其双链茎的长度正好在21~25 nt之间,这样的双链结构易被Dicer酶识别并切割成stRNA,由stRNA抑制翻译。这种方式的RNAi也作用于转录后形成的mRNA,它在调节生物细胞内基因的表达、自身的发育方面起着重要的作用。
请说出其要点。谢谢。急着要啊!周四要考试了啊!呵呵!
RNA干扰不能称之为基因敲出,只出算是KNOCK-DOWN,使表达降低。基因敲出是KNOCKOUT,是把基因的一段序列在DNA层面上去掉。
RNA干扰的机理及特点123
你大爷FqJi2021-07-26
RNAi抑制转座子活性
两方面的证据提示转座子活性的抑制与siRNA有关
① 发现蠕虫mut-7 基因参与RNAi 并且与转座子的转座抑制有关;
② 在果蝇中, 参与RNAi 的RNA 解螺旋酶Spindle-E 的突变将导致该基因引起的基因沉默的缺失, 同时提高了反转录转座子活性。 RNAi抵御病毒感染
在拟南芥中研究转基因引起基因沉默时发现, sgs2/sde1基因突变的拟南芥对病毒的侵染表现出高度的敏感性 。 RNAi参与异染色质的形成和维持
Hall 等研究表明,着丝粒同源重复序列和RNAi 组分一起正负调节着异染色质的形成并共同促使异染色质组装成核;Vople 等在敲除裂殖酵母( S. pombe) 的RNAi 途径基因( 如Argonaute 、Dicer 、RDRP) 时发现异染色质转录得到的dsRNA可以在RNAi 途径的参与下, 加工成si RNA,si RNA 募集异染色质蛋白1( HP1) , 然后靶向性引起相应异染色质区域的转基因沉默。 RNAi参与机体的发育调控及生理代谢
RNAi 只抑制转录后的基因, 所以RNAi 在生物体发育学研究中具有优势。Chuang 等用RNAi 技术进一步证实了AG、CLV3 、AP1 、PAN 等已知功能基因在拟南芥花发育过程中的功能。在RNAi 过程中形成的RISC 复合物可根据不同情况分别利用si RNA 或stRNA 行使不同的功能, 但最终均导致特定基因沉默。向左转|向右转
欲研究某基因的功能,只知道现在很多干扰实验是在细胞水平体外进行实验的.不清楚目前能否应用RNA干扰在小鼠或其它动物上进行,这种设计是否可行.
  请有经验的战友指点,若可以最好能提供几篇应用动物进行RNA干扰研究的文章.
  非常感谢!

找公司设计了重组慢病毒载体,共设计3条干扰序列,转染靶细胞测干扰效率。发现mRNA表达水平下降不明显,而蛋白水平明显下降。请问该如何解释,有相关文献吗?可以用抑制了靶蛋白翻译来解释吗?


1.高效性:Elbashir等在研究中发现分别为25 nmol/L与100 nmol/L的起始双链RNA产生的结果是一样的,只是高浓度起始的更有效些。将双链RNA浓度降低到1.5 nmol/L时产生的基因沉默效果变化不大,只有当浓度降低到0.05 nmol/L时,沉默的效果才消失。Holen等也证实1~100 nmol/L的双链RNA浓度对基因沉默的效果是一致的。这说明双链RNA介导的基因沉默效率是相当高的。需要ATP:Zamore等认为RNAi过程中至少有2个步骤需要能量的供给:一是长的双链RNA被 Dicer所酶切产生双链RNA;二是在双链RNA与RISC结合解链后形成有活性的RISC。
⒉特异性:Elbashir等和Brummel kamp等发现在21~23个碱基对中有1~2个碱基错配会大大降低对靶mRNA的降解效果。
⒊位置效应:Holen等根据人TF(tissue factor)不同的位置各合成了4组双链RNA来检测不同位置的双链RNA对基因沉默效率的影响。在不同浓度和不同类型的细胞中,hTF167i和hTF372i能够抑制85%~90%的基因活性,hTF562i只能抑制部分基因活性,而hTF478i则几乎没有抑制基因的活性。他们还以hTF167为中心依次相差3个碱基对在其左右各合成了几组双链RNA,有趣的是它们所能抑制该基因活性的能力以hTF167为中心依次递减。特别是hTF158i和 hTF161i只与hTF167i相距9个和6个碱基,但它们几乎没有抑制该基因活性的能力。结果还表明双链RNA对mRNA的结合部位有碱基偏好性,相对而言,GC含量较低的mRNA被沉默效果较好。
⒋竞争效应:Hoten等将10 nmol/L和30 nmol/L的hTF167i相比,两者的沉默基因效果无差异,但将20 nmol/L基因抑制效果很差的PSK314i和10 nmol/L的hTF167i相混和后,hTF167i产生的抑制效果明显降低。
⒌可传播性:在线虫中,双链RNA可以从起始位置传播到远的地方,甚至于全身。Feinberg 和Hunter在线虫细胞膜上发现一种跨膜蛋白SID1,它可以将双链RNA转运出细胞,因此系统性的RNAi包括了SID1介导的双链 RNA在细胞间的运输。但在果蝇上并未发现有此基因的同源物,因此在果蝇上通过注射产生的RNAi不能扩散。向左转|向右转
相关疾病:单纯疱疹病毒感染先天性卵巢发育不全综合征年龄相关性黄斑变性视网膜脱离青光眼白内障RNA干扰(RNAinterference,RNAi)是由双链RNA(double-strandedRNA,dsRNA)介导的特异同源靶基因转录后沉默的过程,是生物进化过程中保留下来的基因表达调控......
RNA干扰与基因敲除 123
泽速浪02652021-07-21
基因敲除是指利用各种手段使某个基因不再表达,常见的方法是在基因的转录区插入一段外源DNA序列,从而破坏该基因的表达;RNA干扰是指一类小RNA可以与目的基因配对结合,从而使正常的基因表达受到干扰;基因沉默是指位于有些基因座的基因其表达不活跃甚至不表达的现象。

将EntransterTM-invivo与AmbioninvivosiRNA(作用于凝血因子VII)和阴性siRNA通过尾静脉注射成年小鼠,2天后,取动物肝脏检测。在mRNA水平和蛋白水平观察干扰效果。见上图,图中最左侧组为对照组注射阴性siRNA为3mg/kg,后边3组为每kg动物注射阳性siRNA量分别为1mg/kg,2mg/kg和3mg/kg情况。

根据推荐用量注射EntransterTM-invivo和siRNA(作用于LaminA/C)和阴性siRNA到成年小鼠。注射后2天收集相应的组织,分离RNA,用qRT-PCR分析LaminA/C基因的表达水平。图4为尾静脉结果,图5为各器官分别局部注射结果。

英格恩生物体内转染试剂,3天可完成动物体内转染实验,让动物干扰,基因敲除实验变得简单、快速有效!


您好!(RNA干扰的原理附图有六张,但是这里只能粘贴插入一张图片,你把邮箱给我,我发给你全的原理图)短片断的双链RNA可以通过促使特定基因的mRNA降解来高效、特异的阻断体内特定基因表达,诱使细胞表现出特定基因缺失的表型,称为RNA干扰(RNAinterference,RNAi)。siRNA(smallinterferingRNAs)就是这种短片断双链RNA分子,能够以序列同源互补的mRNA为靶目标,降解特定的mRNA。首先外源导入的dsRNA被切割为19~23nt的小分子干扰RNA(siRNA)。Dicer作为特异性RNA酶家族的一个成员,切割dsRNA为19~23ntsiRNA,这是一个依赖ATP的耗能过程.切割后的siRNA具有3’两个核苷酸TT突出末端。然后siRNA结合到RNA酶复合物上形成RNA诱导的基因沉默复合体(RISC,RNA-inducedsilencingcomplex)。该复合体依赖ATP释能而解siRNA双链成单链以激活RISC。活化的RISC通过由siRNA决定的碱基互补配对原理切割具有同源序列的基因转录本,最终导致基因沉默效应。向左转|向右转
求大神解惑,RNA干扰回复实验是怎么做的?我的实验需要设计一个RNArescue组,不知道怎么操作。
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