CUDASoluble epoxide hydrolase (sEH) inhibitor |
Sample solution is provided at 25 µL, 10mM.
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Chemical structure
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Cas No. | 479413-68-8 | SDF | Download SDF |
Chemical Name | 12-[[(cyclohexylamino)carbonyl]amino]-dodecanoic acid | ||
Canonical SMILES | O=C(NCCCCCCCCCCCC(O)=O)NC1CCCCC1 | ||
Formula | C19H36N2O3 | M.Wt | 340.5 |
Solubility | ≤1mg/ml in ethanol;5mg/ml in DMSO;10mg/ml in dimethyl formamide | Storage | Store at -20°C |
Physical Appearance | A crystalline solid | Shipping Condition | Evaluation sample solution : ship with blue ice.All other available size:ship with RT , or blue ice upon request |
General tips | For obtaining a higher solubility , please warm the tube at 37 ℃ and shake it in the ultrasonic bath for a while.Stock solution can be stored below -20℃ for several months. |
IC50: 11.1 and 112 nM for the mouse and human soluble epoxide hydrolase, respectively
CUDA is a soluble epoxide hydrolase (sEH) inhibitor.
Epoxyeicosatrienoic acid metabolites of arachidonic acid, such as 11(12)-EET and 14(15)-EET, have been identified as endothelium derived hyperpolarizing factors with vasodilator activity. Soluble epoxide hydrolase (sEH) can catalyze the conversion of EETs to the corresponding dihydroxy eicosatrienoic acids thereby diminishing their activity.
In vitro: In a previous study, in order to test if the CUDA’s mechanism of action is retained upon structural modification, the dissociation constants of CUDA was evaluated for mouse sEH. Results showed that for CUDA, competitive a tight-binding inhibition kinetic was obtained with r2 > 0.99. Moreover, the KI value of 3.8 nM was obtained for CUDA. In addition, it was found that CUDA was an inhibitor of sEH exhibiting IC50 values of 11.1 nM and 112 nM for the mouse and human enzymes, respectively [1].
In vivo: Currently, there is no animal in vivo data reported.
Clinical trial: So far, no clinical study has been conducted.
Reference:[1] C. Morisseau, M. H. Goodrow, J. W. Newman, et al. Structural refinement of inhibitors of urea-based soluble epoxide hydrolases. Biochemical Pharmacology 63, 1599-1608 (2002).
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用场效应管运算放大器构成的I-V转换器是测量回路的核心部分。在场效应管运算放大器的正负输入端子为等电位,向正输入端子施加指令电位时,由于短路负端子以及膜片都可等电位地达到钳制的目的,当膜片微电极尖端与默片之间形成10GΩ以上封接时,其间的分流电流达到最小,横跨膜片的电流可100%作为来自膜片电极的记录电流(lp)而被测量出来。
这一伟大的贡献,使Neher和Sakmann获得1991年度的诺贝尔生理学与医学奖。
谢谢各位了。一个完整的膜片钳实验室具体需要些什么。
膜片钳技术及其发展概况(烟台绿叶).part1.rar(9216.0k)
膜片钳技术及其发展概况(烟台绿叶).part2.rar(5975.16k)
传统膜片钳技术每次只能记录一个细胞(或一对细胞),对实验人员来说是一项耗时耗力的工作,它不适合在药物开发初期和中期进行大量化合物的筛选,也不适合需要记录大量细胞的基础实验研究。全自动膜片钳技术的出现在很大程度上解决了这些问题,它不仅通量高[3],一次能记录几个甚至几十个细胞,而且从找细胞、形成封接、破膜等整个实验操作实现了自动化,免除了这些操作的复杂与困难。这两个优点使得膜片钳技术的工作效率大大提高了!签于全自动膜片钳技术的这些优点,目前已经广泛的用于药物筛选。
膜片钳记录不到反应,只有刺激尾迹,是咋回事啊,求助,电流已经调到很大了,可是一点反应也没有
我在做的是海马神经元的wholecellpatch,入液前给正压并hold,入液后阻值4-5M欧,碰到细胞后阻值有零点几欧的变化。撤掉正压,用嘴吸给负压(无法hold住)进行封接,但是封接时候一直没有阻值变化,更别提升到G欧级别了。我们后来也试过用注射器给负压并hold住,但是封接阻值仍旧没有非常大的变化,甚至到不了50M欧。这是为什么???求问
1新生大鼠鼠龄的选择新生大鼠心肌细胞在出生后3 d内具有部分的增殖能力,成年大鼠心肌细胞则为终末分化细胞,不再具有分裂增殖能力.因此,大鼠出生时间越短,其心肌细胞分离后成活率越高,越容易贴壁生长.大量观测表明,选择1~3 d龄大鼠分离其心肌细胞进行原代培养较为理想.其中尤以半日龄大鼠心肌细胞培养效果最佳.
2消化酶的选择及使用
新生大鼠心肌细胞的分离可采用组织块法和消化法,前者因不易获得密度均一的细胞且难控制成纤维细胞的生长而较少采用.消化法中常使用的酶有3种:胰蛋白酶、胶原酶I或Ⅱ以及透明质酸酶.透明质酸酶多与胰蛋白酶或胶原酶联合应用.胰蛋白酶作用较强,容易造成心肌细胞损坏.胶原酶作用较缓和,能消化细胞间质中的胶原纤维以释放细胞,对细胞损伤小,且在新生大鼠心肌组织,以胶原I为主,故我们选用胶原酶I.文献报道胶原酶的工作浓度一般在0.6~1 g?L1,我们使用的为0.8 g?L1.胶原酶最好现用现配.
3消化程度的把握
新生大鼠心肌细胞对酶消化极为敏感.消化过度可使肌原纤维出现萎缩,细胞死亡率增加或丧失贴壁能力及搏动能力;消化不足,细胞聚集成团,无法分清细胞边界,难以形态学观测.消化过程中使用磁力搅拌器时应注意1)转速一般控制在60~80 r?min1左右.(2)每次消化的时间须结合消化酶浓度确定.(3)将粘附在搅拌子上的心肌组织吹散,使酶液充分接触组织.(4)适宜温度为35~37℃.(5)当组织由红转白呈半透明状态时,应停止消化.
4接种的细胞密度
心肌细胞接种密度不仅影响细胞间的相互接触,进而影响细胞对肥大刺激的反应,而且影响长期培养细胞的成活率.接种细胞的绝对数量应经精确计算.一般而言,应根据实验的观测目的决定单位面积上的细胞数量.例如,如作形态学观测,六孔板中每孔的接种细胞数量应控制在1×105~2×105个;若需收获心肌细胞作mRNA或蛋白表达水平的观测,则每孔的接种密度可增加到5×105~6×105个.
本人是一名专业研究生,正在参加北京市规培。尽管作为一名专硕,导师交给的却是基础课题,实验需要用到膜片钳,本人对此一无所知,科里实验室目前也没有膜片钳,还要联系外面实验室学习。听一个师兄说,他当初光学技术就有近半年时间,对此真是苦恼,实在觉不出规培能挤出那么多时间。
请问做过的老师,膜片钳学习曲线一般要多久?你们认为我一个专硕在完成规培的前提下能兼顾到膜片钳实验么?
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