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Bio-Synthesis/HIF - 1 {alpha} (556 - 574)/1 mg/10644-01
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Bio-Synthesis/HIF - 1 {alpha} (556 - 574)/1 mg/10644-01
品牌 / 
Bio-Synthesis
货号 / 
10644-01
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4000-520-616
HIF - 1 {alpha} (556 - 574)
Sequence (1LC):
DLDLEMLAPYIPMDDDFQL
Sequence (3LC):
H - Asp - Leu - Asp - Leu - Glu - Met - Leu - Ala - Pro - Tyr - Ile - Pro - Met - Asp - Asp - Asp - Phe - Gln - Leu - OH
Catalog :
10644-01
Unit:
1 mg
Price/Unit:
$122(For other quantities please Contact Us or call 972-420-8505)
Purity:
>95%
Format:
Lyophilized solid, trifluoroacetate (TFA) salt format
Storage:
-20°C
Product Usage:
This product is for research use only. Not for use in diagnostic or therapeutic procedures.
M.W.:
2254.6
Reference/Citations:
Ref: Hirsilä, M. et al. J Biol. Chem 278, 30772 (2003); Robinson, B. Pediatric Research 50, 673 (2001).
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2021-08-04
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血气分析是指通过测定血液中的氧分压 (PO2)、二氧化碳分压 (PCO2)、血液酸碱度(pH)及相关的一系列指标来评价患者的氧合作用、通气功能和酸碱状态,在呼吸衰竭的诊治、危重症的抢救和监护等发挥重要作用。目前大多数血气分析仪在血气分析的同时,还检测另一组非常重要的生命指标:钾、钠、钙等电解质浓度。电解质除维持体液渗透压及酸碱平衡外,还广泛参与 查看更多>
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在医学和生物学领域,在实验的过程中,经常需要在恒温下对实验对象进行振荡混匀操作。如果用人工的方法,既不好保证恒温,更不容易振荡混匀,为了解决这个难题,技术人员研发出恒温混匀仪,它可以在很短的时间内就达到实验要求的温度并且保持恒温,而且可以轻易的实现振荡混匀的操作,这在很大程度上加快了实验的速度,不但提高了工作效率,更重要的是实验的准确度大大的得到了提升。 查看更多>
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用5毫升规模的菌表达蛋白,收菌用缓冲液重悬后有250微升的重悬液,通常是加LoADIngBuffer混匀后煮样破碎细胞,但现在我还需要对细胞中的蛋白进行进一步处理,但如此少的重悬液又无法用超声波破碎,而煮样后所有蛋白都变性了,又无法继续处理,谁能告诉我还有什么效果好的破碎这样的重悬液的方法?
加loADIngbuffer裂解细胞/细菌以后,样品里面的DNA会和SDS形成一团东西,无法直接上样

平常都是用超声破清洗器水浴超声破碎大约20分钟,然后上样的

但是一方面,常温超声不知道会不会造成蛋白降解破坏,因为发现加冰以后超声会变得非常弱,所以都么加冰。另一方面,因为水浴超声声强是不均匀的,如果样品多的话,会发现有些已经超碎DNA,但有些还是一团。

不知道是否有其他更好的方法?
对细胞破碎后获得的生物大分子的电泳方法大都采用凝胶电泳。如果要分析核酸等大的DNA或者RNA分子通常利用琼脂糖凝胶电泳或聚丙烯酰胺凝胶电泳;如果是分析蛋白质,则通常在加入十二烷基硫酸钠的聚丙烯酰胺凝胶中进行。以DNA凝胶电泳为例,电泳的操作步骤如下:

1、安装电泳槽
将有机玻璃的电泳凝胶床洗净,晾干,用胶带将两端的开口封好,放在水平的工作台上,插上样品梳。
2、琼脂糖凝胶的制备
称取琼脂糖溶解在电泳缓冲液中,(按0.3-1.5%的琼脂糖含量,1-25kb大小的DNA用1%的凝胶,20-100kb的DNA用0.5%的凝胶,200-2000bp的DNA用1.5%的凝胶)置微波炉或沸水浴中加热至完全溶化(不要加热至沸腾),取出摇匀。
3、灌胶
将冷却到60℃的琼脂糖溶液轻轻倒入电泳槽水平板上。
4、待琼脂糖胶凝固后,在电泳槽内加入电泳缓冲液,然后拔出梳子。
5、加样
将DNA样品(DNA样品是细胞破碎之后用离心管离心沉淀获得的)与加样缓冲液按4:1混匀后,用微量移液器将混合液加到样品槽中,每槽加10-20μl,记录样品的点样次序和加样量。
6、电泳
安装好电极导线,点样孔一端接负极,另一端接正极,打开电源,调电压至3-5V/cm,电泳1-3hr,当溴酚蓝移到距凝胶前沿1-2cm时,停止电泳。
7、染色和观察
取出凝胶,放在含有溴化乙锭的染色液中染色30min,即可在254nm的紫外灯下观察,有橙红色荧光条带的位置,即为DNA条带,或在紫外灯下照相记录电泳图谱。溴化乙锭是致癌剂,操作时要小心,必须戴手套。
超声波细胞破碎123
ecor2004-10-19
我最近做超声波破碎大肠杆菌,但是一直效果都不好,看了一些帖子,但是还是没弄明白。请问:裂解缓冲液需要加多少(?ml/g菌)?超声波作用的时间一般是多少(有人说半小时,有人说10分钟以内)?破碎后菌液是什么状态的?会变澄清吗?如果一次做60ml菌液(置于100ml离心管中),需要注意什么呢?
处方分析全123
选择性失忆19922017-09-30
硼酸和石蜡研磨能充分混匀吗
RKEF工艺技术123
2017-09-30
什么是RKEF工艺
酵母细胞的破碎实验123
liuyujia2007-04-05
欲破碎酵母细胞,提取胞内活性物质。尝试了超声波处理、热水处理、石英砂研磨、SDS、DMSO、甲苯处理、反复冻溶等方法,镜检观察效果都很不理想。请问还有什么方法较有效,或者是否有更可靠的检测方法?谢谢!
会不会导致DNA片段破碎?
样品一般都要做到最好,你看成品的具体要求,水分、细度、合格率等。
大家好,有谁知道真菌细胞壁的破碎方法,各种试剂的使用浓度,越详细越好,谢谢
我用pET28a作载体,转化E.coliBL21。诱导400mL菌液收菌后PBS洗3遍,后用PBS定容至10mL,加溶菌酶至终浓度1mg/ml。作用30min,后加PMSF,PeP,BEN.混匀,超声,超3s停4s,超了1h菌液没大变化。以上操作均在冰上。

我怀疑溶菌酶有问题,因为其消化的30min内菌液几乎没大变化,而我曾看到别人用溶菌酶消化时菌液变的挺粘稠。

今下午再做时还是没什么变化,但发现溶菌酶在冰上静置2-3h后竟然沉淀下来了,而且上清和下面的白色溶菌酶分界明显,是我的溶菌酶配的有问题吗?出现这种情况溶菌酶还能用吗?我是-20度保存的。

下一步怎么处理菌液呢?

请高手多多指教!
我想用大肠杆菌来表达一种磷脂酶,目前我用的方法是先加溶菌酶和保护剂,15-20min后,再用超声波1min,可是跑出的带很不清晰,看上去就是一片蓝而已,好像是有所降解吧。不知是哪里做的不好了
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